Trithemis annulata
Deliry C. [2025] – Trithemis annulata - In : Odonates du Monde (Histoires Naturelles) (2004-[2025]) – Version 52169 du 11.02.2025. – odonates.net
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Trithemis annulata (Palisot de Beauvois, 1807)
Palisot de Beauvois A.M. 1805-21 - Insectes recueillis en Afrique et en Amérique dans les royaumes d'Oware et de Bénin, à Saint-Domingue et dans les États-Unis, pendant les années 1786-1797. - Fain & Cie, Paris : [Libellules] : [1807 - livraison 4] 68-69 + [1807 - livraison 5] 84-85 + [1817 - livraison 10] 171-172. - PDF
Localité-type - Nigéria (Royaume d'Oware).
- Libellula annulata Palisot de Beauvois, 1807
- Trithemis annulata (Palisot de Beauvois, 1807)
- Libellula ferruginea Hagen, 1840 (nec Fabricius, 1775) partim [A voir pour la WOL]
- Libellula rubrinervis de Selys Longchamps, 1841 (incl. Trithemis annulata annulata, Trithemis annulata rubrinervis, Trithemis haematina selika)
- Libellula haematina Rambur, 1842 partim (incl. Trithemis annulata rubrinervis, Trithemis haematina haematina, Trithemis haematina selika) [A voir pour la WOL]
- Libellula obsoleta Rambur, 1842
- [Libellula haematodes] (musée Bérol. Belgique in de Selys Longchamps & Hagen 1850) (nec Burmeister, 1839)
- Trithemis violacea Sjöstedt, 1899 [A voir pour la WOL]
- Trithemis scorteccii Nielsen, 1935
Autres taxonymes signalés - Libellula annulata Palisot de Beauvois, 1805 [recte 1807][1], Trithemis annulata (Palisot de Beauvois, 1805) [recte 1807], Orthetrum annulatum (Palisot de Beauvois, 1807) [genre possible : Kirby 1890[2]], Libellula ferruginea Hagen, 1839 partim [Hagen 1839 : n°7 : de Selys Longchamps & Hagen 1850], Trithemis violacea Sjöstedt, 1900 [recte 1899 : [2024]]
Libellule annulée [Palisot de Beauvois 1807], Libellule à nervures rouges [de Selys Longchamps & Hagen 1850], Libellule violacée [(2006)], Libellule purpurine [(2008)], Trithémis annelé - (en) Violet Dropwing
Par confusion avec Erythemis attala (de Selys Longchamps in de la Sagra, 1857)
- Libellula annulata Palisot de Beauvois, 1807 [synonyme de Mesothemis annulata : Hagen 1861, 1875 : Brésil : ce qui relève d'une erreur : Libellula annulata Rambur, 1842 (nec Palisot de Beauvois, 1807), Mesothemis annulata Hagen, 1861 (nec Palisot de Beauvois, 1807) (nomen nudum), Mesothemis annulata (Martin, 1896) : synonymes de Erythemis attala : voir Mauffray & Tennessen 2019]
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🔍 - ©© byncsa - Cyrille Deliry - Histoires Naturelles - Corse |
Commentaires
- Rangée dans la famille des Trithemistidae dès 2004, puis replacée un temps dans la famille habituelle des Libellulidae, avant de revenir à l'option initiale des Trithemistidae en 2014 (Deliry 2014).
- Trithemis haematina (Rambur, 1842) (Libellula haematina Rambur, 1842 partim) est regardée ici comme une bonne espèce. J'ai envisagé cette option de longue date ([2006]) et je l'ai formulée explicitement plus récemment (Deliry 2019a). Elle est alors accompagnée de Tramea erythraea Brauer, 1867 comme synonyme ♥.
- Libellula haematina Rambur, 1842 et Tramea erythraea Brauer, 1867 sont considérés par la WOL (Paulson & al. [2025]) ♣ comme des synonymes de Trithemis annulata.
- La série d'articles de Pinhey des années 1960 reste à trouver et à examiner (Pinhey 1962a, 1962b, 1962c). - [A traiter !]
- Un examen supplémentaire de taxons voisins s'avèrera utile de plus : Trithemis kalula et Trithemis persephone - [A traiter !]
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Libellula annulata par Palisot de Beauvois (1807) d'Afrique occidentale (Royaume d'Oware). Cette illustration, probablement "erronée" semble correspondre à une ♀ d'Orthetrum ce qui pourrait expliquer le placement de cette espèce sous Orthetrum annulatum par Kirby (1890) et la question mérite d'être posée ([2025a])[3] 🔍 | Libellula rubrinervis d'Algérie selon une planche extraite de Lucas (1849), venant illustrer Trithemis annulata rubrinervis à mon sens. 🔍 |
Éléments de description
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🔍 - Description originale de Palisot de Beauvois (1807 : 69) |
Sous Trithemis annulata : 9 1/2 à 11 1/2 cellules anténodales. Pterostigma mesurant de 2,5 à 3 mm, brun jaune clair avec des marques noires. Nervures périphériques de taille variable, jaune doré clair à brun doré clair. Tache basale des deux ailes, généralement sans rayons sombres. Nervures rouges jusqu'au ptérostigma. Plus foncé seulement à l'extrémité de l'abdomen qui porte une bande noire dorsale en S7-8 (Ris 1912).
Sous Trithemis violacea : 11 1/2 à 12 1/2 cellules anténodales. Ptérostigma mesurant 3 mm, brun-rouge bordé nervures noires. Tache de la base des ailes postérieures assez profondément brun-doré avec des centres obscurcis (Ris 1912).
Sous Trithemis scortecii : 9 1/2 cellules anténodales sur l'ailes antérieur, mais 7 seulement sur la postérieure. Ptérostigma mesurant 2 mm. L'individu examiné est de très petite taille et qualifié de "nain" (abdomen long de 17 mm seulement, contre 19-24 mm pour les populations Paléarctiques). Les pièces sexuelles s'approchent de celle de Trithemis stictica, dont elle se distingue par divers caractères toutefois et c'est de l' annulata qu'elle se rapproche le plus. L'auteur, Nielsen (1935), ne donne pas d'éléments de coloration distinctifs pour les spécimens étudiés qui sont 2 jeunes ♂ pris le 16 mars 1934 en Lybie (Fezzan, Elbarkat). Il s'agit de toute évidence à mon sens d'une simple forme naine, à nervation réduite, de l'annulata et plus probablement de la sous-espèce rubrinervis.
En synthèse : 9 1/2 à 12 1/2 cellules anténodales (plus nombreuses chez les espèces voisines). Ptérostigma mesurant de 2,5 à 3 mm (comme les espèces voisines), brunâtre teinte jaune-rougeâtre (sinon plus rouge), bordé de noir (non bordé a priori sinon). Des taches sont présentes à la base des deux ailes (avec, mais plus réduites ou sans marques basales sinon), qui présentent une nervation rouge étendue jusqu'au ptérostigma (plus brèves, jusqu'au nodus ou a contrario jusqu'à l'apex sinon). Terminaison de l'abdomen assombri avec une bande noire dorsale en S7-S8 (S8-10 marqués de noire, voire entièrement noirs, sinon) ([2025b]).
Sous-espèces
Par hypothèses biogéographiques, je propose d'envisager les deux sous-espèces suivantes ([2025b]).
- Trithemis annulata annulata (Palisot de Beauvois, 1807)[4] - Afrique subsaharienne.
- Trithemis annulata rubrinervis (de Selys Longchamps, 1841) - Bassin méditerranéen, en expansion en Europe, jusqu'en Lybie et au Soudan (avec des individus de la forme naine scortecci), ainsi qu'en Asie occidentale, notamment au Moyen-Orient et au-delà.
Le taxon désigné sour Trithemis annulata haematina est une espèce distincte : Trithemis haematina ([2020] et avant).
Variations
La ♀ peut présenter une androchromie partielle (Cochet 2011). Les individus pris en Algérie sont plus grands que ceux de Sicile (de Selys Longchamps & Hagen 1850). Voir aussi Goyaud (1995).
- Trithemis annulata f. scorteccii Nielsen, 1935 - Forme naine, indiquée localement, probablement associée à la sous-espèce rubrinervis ([2025b]).
Répartition
Espèce éthiopienne connue dans toute l'Afrique (Askew 1988), afro-tropicale où elle atteint l'Afrique-du-Sud et présente en Asie occidentale elle n'était présente en Europe au XIXe siècle, qu'en Sicile ainsi que peut-être en Italie continentale (Toscane ([?]) ([2006]). En 1968, l'espèce était principalement connue d'Afrique (d'Aguilar & Dommanget 1998) et la progression commence en Europe dès les années 1970 (Espagne, Sardaigne, Italie notamment) ([2025b]). Elle est résumée par Bonet Betoret (2004). Cette progression pourrait s'expliquer par le réchauffement du climat ou par la poursuite de l'extension de l'espèce s'adaptant peu à peu à un climat tempéré dans la suite de la déglaciation moderne (d'Aguilar & Dommanget 1998). Elle s'étend toujours en Italie, en France et désormais dans les Balkans qu'elle a commencé à coloniser respectivement des les années 1990 et pour les Balkans, la fin des années 2010 ([2025b]).
- Nigéria (Oware : Palisot de Beauvois 1807).
- Sicile (rubrinervis : Ghiliani selon Gené, Hagen père (Catala Girone : septembre) : de Selys Longchamps 1841 ; haematina : Rambur 1842 : en fait Trithemis annulata rubrinervis : [2025]). Probablement déjà établie à l'époque ([2006]).
- Sénégal (rubrinervis : de Selys Longchamps 1841 ; plus probablement annulata : [2006, 2025b]).
- Syrie (rubrinervis : de Selys Longchamps 1841).
- Algérie (rubrinervis : Lucas 1849). Elle n'y est jamais abondante et semble absente au cœur du Sahara ([2021]). Elle est devenue abondante sur la Seybousse (Khelifa & al. 2011).
- Italie (rubrinervis : possible en Toscane (Radiconafi : août) : Hagen père : de Selys Longchamps & Hagen 1850). Elle a occupé d'abord la Sardaigne (Ris 1912) et certainement la Calabre, mais à la fin des années 1990, sauf cas d'erratisme ponctuel, elle n'est pas installée plus au nord que Naples. Elle a progressé notoirement au cours des dernières décennies et elle est indiquée, signalée entre 2006 et 2008 dans plusieurs localités de la région de Rome et en Toscane ([2008]). Elle est vue pour la première fois en Lombardie en [2017, où elle est désormais dûment reproductrice (Gheza & al. 2019), elle est repérée vers Lugano en 2020 au nord du pays. Elle a bientôt atteint les populations de Provence en France par le Golfe de Gène ([2025b]). Son installation et expansion en Italie est relativement synchrone à celle constatée en France et expliquée récemment (Vinko & Šalamun 2021, Koren & al. 2022).
- Sardaigne (Ris 1912).
- [Madagascar] (haematina : Rambur 1842, rubrinervis : de Selys Longchamps & Hagen 1850 ; il s'agit plus exactement de Trithemis haematina selika à mon avis : [2025b]).
- Chypre (rubrinervis : de Selys Longchamps 1887).
- Egypte (rubrinervis : de Selys Longchamps 1887).
- Liban (rubrinervis : de Selys Longchamps 1887).
- Cameroun (Ris 1912).
- Ethiopie (Abyssinie : Ris 1912).
- Gambie (Ris 1916).
- Tunisie (Ris 1916).
- Afrique-du-Sud (Ris 1921).
- Lybie (dont f. scorteccii : Nielsen 1935).
- Arabie (Pinhey 1958).
- Iraq (Pinhey 1958).
- Espagne[5] (Dès 1978 (Andalousie) : Lieftinck 1979). En lente expansion par les côtes de la Péninsule ibérique ou par les voies naturelles comme le Galdalquivir, le Tage ou l'Ebre, on trouvait en juillet 1994 une importante colonie vers Gerona (Grand 1994). Elle était dans le nord du pays en 1990 (Grand 1990).
- Portugal (Aguiar & Aguiar 1985).
- France[6] - Dès 1989 en Corse (Roché 1989). Première mention en France continentale dans les Pyrénées-Orientales en juillet 1994 (Grand 1994). Elle est dans l'Hérault en juin 1999 (Baierl & Lohr 2004)[7], la même année elle est signalée vers Toulouse (Haute-Garonne) secteur où je l'observe personnellement le 12 août 2004. La jonction par le seuil du Lauragais est donc entamée précocement ([2025b]). Sa "remontée" dans les Hautes-Pyrénées est postérieure (Bernard 2006). Selon le front méditerranéen (Grand 2003b), elle est découverte dans le Gard en 2005 (Daniel Grand) ([2020]) et elle a conquis le sud de la [[Provence depuis[8]. Une petite population détectée par Tanguy Frémion le 2 août 2009 (Vaucluse) a existé au moins quelques années vers Apt. Première mention en Rhône-Alpes en 2008 (Deliry 2017), l'espèce n'est pas revue ensuite avant 2016 et elle s'installe alors durablement dans le sud de l'Ardèche et dans la Drôme jusqu'au niveau de Valence où existent désormais des populations significatives[9]. Elle pénètre par la façade Atlantique dans les années 2000 et a remonté jusqu'au niveau de la Loire occasionnellement depuis[10] - Dès 2009, j'ai rédigé régulièrement des points sur la progression de l'espèce en France, ayant publié le dernier point en 2017 (Deliry 2010, 2017a) et une enquête participative est dédiée à cette espèce par l'Observatoire Naturaliste des Ecosystèmes Méditerrannéens, alors en collaboration avec Tela-Insecta et Tela-Libellules (Sablain & al. 2018).
- Corse - Semble absente en 1986, trouvée en 1989 dans la région d'Aléria (Roché 1989). Un nombre signification de localité est connu en 1999 et l'île est fortement colonisée à la fin des années 2000 (2009, obs. pers. : Cyrille et Héloïse Deliry), mais les populations restent moindres qu'en Sardaigne (obs. pers. de 2007 : C.Deliry).
- Soudan (dont f. scorteccii : Steinmann 1997).
- Bénin (nouvelle : Tchibozo & Dijkstra 2004).
- Lesbos (van Leeuwen [2004]).
- Botswana (subsp. annulata : Kipping 2006).
- Sardaigne (population souvent significative est forte : obs. pers. de 2007 : Cyrille Deliry & Régis Krieg-Jacquier).
- Malte (Balzan 2008).
- Turquie ([2008]).
- Sahara occidental (Medjani & al. 2014).
- Canaries (nouvelle : Deliry 2017b).
- Bulgarie (nouvelle : [2018]).
- Hongrie (nouvelle : [2020], Vinko & Šalamun 2021).
- Albanie (Vinko & Šalamun 2021).
- Monténégro (Vinko & Šalamun 2021).
- Slovénie (Vinko & Šalamun 2021 ; reproduction envisagée : Dobovišek & al. 2023).
- Croatie (nouvelle : Koren & al. 2022).
Habitats
Eaux stagnantes ou eaux légèrement courantes de la plaine à moyenne altitude (connue jusqu'à 1500 m dans son aire Paléarctique : lagunes littorales, étangs, plans d'eau de carrières, parties calmes des cours d'eau, etc (d'Aguilar & Dommanget 1998, Deliry 2017b). C'est une espèce éclectique : mare, étang, gravières, marécages côtiers, lac, retenue artificielle avec fort marnage, ainsi que milieux de substitution comme des rivières calmes et même des ruisseaux dans la mesure où quelques grandes vasques d'eau permanente existent (Grand 1994). En Corse, elle était au départ, à basse altitude : étangs côtiers, grands bassins-réservoirs et cours inférieur de certaines rivières (Grand 2003b), elle a colonisé aussi divers cours d'eau lents ([2025b]).
J'ajoute le fait que l'espèce a de fortes capacités d'erratisme, visible en particulier chez les ♂ ([2006]), les ♀ étant plus discrètes, elles sont moins facilement observées ([2025b]). Grand (1994) soulignait déjà se fait en précisant qu'en Espagne des observations "regulières" de ♂ isolés, sont faite dans le nord du pays.
Phénologie
Vole d'avril à novembre dans le domaine Paléarctique (d'Aguilar & Dommanget 1998), tant dans l'Europe méridionale (Deliry 2017b), qu'en Algérie (Samraoui & Ménaï 1999), signalée jusqu'en octobre en Turquie ([2008]). En Afrique du Nord, elle a été observée par exemple au Maroc le 24 décembre 2002 (Grand 2003a). En Afrique, elle est active à l'état imaginale toute l'année, ce qui est confirmé en Egypte par exemple (Deliry 2017b).
Noter l'observation d'un ♂ solitaire et territorial du 17 juillet au 26 août 2008 sur le Lez vers Montpellier (France : Hérault, M.Séeguin)
Les émergences se poursuivent jusqu'en octobre dans les Landes (France : A.Cochet, in litt., 4 septembre 2019 [b]). L'espèce est bivoltine dans la région méditerranéenne et multivoltine dans les zones tropicales, le développement larvaire pouvant se faire en 7-8 semaines (J.P.Boudot, in litt., 4 septembre 2019 [b]).
Notes de biologie
Voir Dell'Anna (1991).
Ethologie
Voir Dell'Anna & Utzeri (1990).
Illustrations
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🔍 - ©© byncnd - Alain Cochet |
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🔍 - ©© bysa - D.Alquier - Saix (France, Tarn) ONEM |
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©© byncsa - Cyrille Deliry - Histoires Naturelles 🔍 | © Camille Le Merrer - France, Pyrénées-Orientales 🔍 |
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🔍 - ©© byncsa - A.Cochet - 4 septembre 2015 - ♂ subémergeant (France, Landes) |
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🔍 - ©© byncnd - Alain Cochet - ♂ immature |
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🔍 - ©© byncnd - Alain Cochet - ♂ immature, plus âgé que le précédent |
Descriptions associéesLibellula rubrinervis de Selys Longchamps, 1841Localité-type - Italie, Sicile (♂ : col. Muséum de Bruxelles)
(Re)description de Libellula rubrinervis (de Selys Longchamps & Hagen 1850 : 26-27) : ♂ adulte. Tête d’un rouge clair, le lobe intermédiaire de la lèvre inférieure , le bord interne des latéraux et le bord de la supérieure noirs. Vertex et vésicule d'un violet métallique; yeux rougeâtres. Thorax rouge obscur, saupoudré de violâtre pulvérulent entre les ailes et marqué de trois ou quatre lignes noires luisantes sur les côtés. Abdomen médiocre, un peu déprimé, en entier d'un rouge cramoisi éclatant, plus ou moins saupoudré de bleu-violâtre pulvérulent ; une petite tache dorsale sur S8 et S9 et la base de S10 noires. Appendices anals supérieurs minces, en fuseau, d'un rouge pâle, ayant plus de deux fois la longueur de S10 ; l’intérieur un peu plus court, triangulaire, recourbé en haut. Pieds noirâtres, la base et l'intérieur des cuisses, surtout des antérieures, un peu jaunâtres. Ailes hyalines ; une petite tache parfois presque nulle à la base des supérieures et un grand espace jaune safrané foncé à celle des inférieures ; ptérostigma médiocre (long de 1 l. 1/4) assez mince, rouge, bordé par deux lignes noires ; membranule accessoire cendrée, jaune à sa base ; toutes les nervures des ailes et des cellules d’un rouge de laque. 10 à ll nervules anténodales. Libellula obsoleta Rambur, 1842[11]Localité-type - Inconnue, mais pourrait être l'Espagne où ce serait alors une mention très anciennes sur la Péninsule Ibérique qui de réputation n'a pas été occupée avant les années 1970 ([2025b]).
Trithemis violacea Sjöstedt, 1899Localité-type - Cameroun, Lac Richard, 2 novembre 1891, récoltée par l'auteur. Clé de Ris (1912) sur le groupe incluant annulata
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Références
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Espèces classées dans le même genre
Trithemis, Trithemis aconita, Trithemis aenea, Trithemis aequalis, Trithemis africana, Trithemis annulata, Trithemis anomala, Trithemis apicalis, Trithemis arteriosa, Trithemis aurora, Trithemis basitincta, Trithemis bifida, Trithemis bredoi, Trithemis brydeni, Trithemis congolica, Trithemis dejouxi, Trithemis dichroa, Trithemis donaldsoni, Trithemis dorsalis, Trithemis dubia, Trithemis ellenbeckii, Trithemis festiva, Trithemis fumosa, Trithemis furva, Trithemis grouti, Trithemis haematina [+], Trithemis hartwigi, Trithemis hecate, Trithemis hinnula, Trithemis imitata, Trithemis integra, Trithemis kalula, Trithemis kirbyi, Trithemis lateralis (nomen dubium) [+], Trithemis leakeyi, Trithemis legrandi, Trithemis lilacina, Trithemis longistyla, Trithemis maia (→ Trithemis haematina maia), Trithemis monardi, Trithemis morrisoni, Trithemis nigra, Trithemis nuptialis, Trithemis osvaldae, Trithemis pallidinervis, Trithemis palustris, Trithemis persephone, Trithemis pluvialis, Trithemis pruinata, Trithemis selika (→ Trithemis haematina selika), Trithemis stictica, Trithemis tropicana, Trithemis werneri
Les taxons affines à Trithemis annulata et Trithemis haematina
Notes
- ↑ Régulièrement datée de 1805 (en suivant par exemple Kirby 1890 ou Bridges 1994), on trouve chez Griffin (1932) et Menke (1962) les éléments pour corriger la date de description en 1807, ce qui est lisible chez Davies & Tobin (1985) ou Hedge & Crouch (2012) et progressivement généralisé dès 2019 (Deliry 2019a) alors que je signale à la correction à faire pour la WOL.
- ↑ Ce qui est à vérifier dans les collection ([2025a]). Les deux sexes semblent présents et les spécimens types seraient au Muséum de Bruxelles. J'ai entrepris des démarches pour avoir plus de précisions sur ceux-ci (com., 6 février 2025 [b]).
- ↑ Selon Ris (1912), le type de Palisot de Beauvois est un ♂ et se trouve dans les collections d'Edmond de Selys Longchamps à Bruxelles. Il convient d'en vérifier la réalité et ma lecture "difficile" du texte en Allemand chez Ris (op. cit.) ne m'a pas permis de vérifier si ceci avait été fait alors
- ↑ Cette sous-espèces est bien utilisée par Kippings (2006) dans sa liste des Odonates du Botswana.
- ↑ La Libellula obsoleta décrite par Rambur (1842), taxon correspondant à Trithemis annulata rubrinervis pourrait provenir d'Espagne, sans certitude (!), dans la mesure pù le spécimen est issu de la collection Serville !
- ↑ Evolution de la présence en France de 1989 à 2018
🔍 - Extrait de Sablain (2008) - ©© by
🔍 - © Grand, Boudot & Doucet (2019) (Biotope éditions) - ↑ Le nord du département de l'Hérault est atteint avec la mention d'un ♂ immature le 6 juillet 2002 au Lac de Salagou (Antoine Griboval).
- ↑ Elle est en Provence en [2008], trouvée successivement dans le Var en août (Y.Cher) et dans les Bouches-du-Rhône en octobre (Julien Renoult), connue dans le Var vers Fréjus et le Lac de Saint-Cassien (obs. pers. d'une ♀ le 18 août 2010) en 2010 et elle atteint désormais les Alpes-Maritimes (côté Var), confinée néanmoins dans le sud de la région. Côté Italie la jonction est presque faite par le Golfe de Gène ([2025b]).
- ↑ Des remontées de plus en plus régulières ont atteint et même dépassé le nord de la Rhône-Alpes puisqu'elle a été vue ponctuellement jusqu'en Saône-et-Loire par exemple ([2025b]).
- ↑ Elle est dans les Landes en 2004 (Darblade & Ducout 2005). Première mention le 26 juin 2005 en Gironde à Villenave-d'Ornon avec 3 ♂ et 1 ♀ (B.Jourdain, in litt.), puis les 8 et 24 septembre 2025 à Latresne (S.Wilson ; puis F.Vaillant, in litt.). Elle est en Charente-Maritime à Saint-Bonnet-sur-Gironde (Philippe Jourde, in litt. ; Jourde & Hussey 2005). En 2009, elle est découverte en Dordogne et en octobre 2018, une mention est donnée au niveau de l'Indre-et-Loire (P.Vary & olim : Vary & Sansault 2020).
- ↑ On trouve chez de Selys Longchamps (in Pollen & van Dam 1869) des détails sur deux ♀ (types de la Libellula obsoleta) qui présentent une extension de la marque basale des ailes une peu plus étendue que de coutume.
- ↑ Rambur (1842) désigne par styles les pièces supérieures de la terminaison abdominale.